水浴算法

❶ 苯酚是放在试剂瓶里加热熔化的，那水浴的温度应该提高到多少呢

理论上水浴的温度超过41就可以了,不过要快点的话最好有50度以上.
另外要看你的苯酚含水不?含水的苯酚熔点会降低很多,大概每增加0.1%的水分,其熔点会降低0.4度(经验算法,和实际稍有偏差)!
欢迎提问苯酚的问题!!

❷ 什么情况下需要计算置换价还有什么计算方法

由于药物与基质相对密度不同，加入药物所占体积不一定是等重量基质体积，特别是堆密度小的药物占有的体积更大，为使栓剂含药量准确，必须测定置换价，从而准确计算基质用量。

❸ 如何实现猪舍温度自动化控制

猪舍除了温度控制外，通常还需控制通风、湿度；
光是温度控制的话，很简单：在典型位置布置温度传感器，合适位置装加热器，两个装置自动化连在一个XMT调节仪器上，设定好需要的温度就可。前面只是对小型猪舍适用，大型的，场地大，需多点设置传感器和加热器，温度场还有耦合关系（相互影响），控制就复杂了，不是简单的XMT调节仪器能够解决的，需要用到计算机、智能算法控制策略了，如果加上通风、湿度等问题，就更加复杂了。看你对象特征、需求了，这么简单的一问，人家很难回答，真有需求的话，把问题讲全面仔细了。

❹ 您好，我想请教一下食品菌落总数计算方法，和怎么做出厂检验报告

1 范围

本标准规定了食品中菌落总数（Aerobic plate count）的测定方法。

本标准适用于食品中菌落总数的测定。

2 术语和定义

2.1 菌落总数 aerobic plate count

食品检样经过处理，在一定条件下（如培养基、培养温度和培养时间等）培养后，所得每g（mL）检样中形成的微生物菌落总数。

3 设备和材料

除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：

3.1 恒温培养箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。

3.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。

3.3 恒温水浴箱：46 ℃±1 ℃。

3.4 天平：感量为0.1 g。

3.5 均质器。

3.6 振荡器。

3.7 无菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。

3.8 无菌锥形瓶：容量250 mL、500 mL。

3.9 无菌培养皿：直径90 mm。

3.10 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。

3.11 放大镜或/和菌落计数器。

4 培养基和试剂

4.1 平板计数琼脂培养基：见附录A 中A.1。

4.2 磷酸盐缓冲液：见附录A 中A.2。

4.3 无菌生理盐水：见附录A 中A.3。

5 检验程序

菌落总数的检验程序见图1。

图

1 菌落总数的检验程序
6 操作步骤

6.1 样品的稀释

6.1.1 固体和半固体样品：称取25 g 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8000 r/min～10000 r/min 均质1 min～2 min，或放入盛有225 mL 稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min～2 min，制成1:10 的样品匀液。

6.1.2 液体样品：以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:10 的样品匀液。

6.1.3 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓慢注于盛有9 mL 稀释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。

6.1.4 按6.1.3 操作程序，制备10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1 次1 mL 无菌吸管或吸头。

6.1.5 根据对样品污染状况的估计，选择2 个～3 个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进行10 倍递增稀释时，吸取1 mL 样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1 mL 空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。

6.1.6 及时将15 mL～20 mL 冷却至46 ℃的平板计数琼脂培养基（可放置于46 ℃±1 ℃恒温水浴箱中保温）倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。

6.2 培养

6.2.1 待琼脂凝固后，将平板翻转，36 ℃±1 ℃培养48 h±2 h。水产品30 ℃±1 ℃培养72 h±3 h。

6.2.2 如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基（约4 mL），凝固后翻转平板，按6.2.1 条件进行培养。

6.3 菌落计数

可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位（colony-forming units，CFU）表示。

6.3.1 选取菌落数在30 CFU～300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU 的平板记录具体菌落数，大于300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。

6.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以2，代表一个平板菌落数。

6.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌

❺ 用比重瓶测硫酸的含量，步骤及计算方法。

①将比重瓶置于恒温水浴中，并保持一定温度t。②称得比重瓶本身的质量为ω，装满纯水时总质量为W
③比重瓶装满硫酸时的总质量为W′
硫酸的比重
=（W’ーω）/（Wーω）

❻ 酒精度数如何计算

酒的度数表示酒中含乙醇的体积百分比，通常是以20℃时的体积比表示的，如50度的酒，表示在100毫升的酒中，含有乙醇50毫升(20℃)，酒精度一般是以容量来计算，故在酒精浓度后，会加上“Vol. ”以示与重量计算之区分。

标准酒度：标准酒度（Alcohol% by volume）。标准酒度是法国着名化学家盖·吕萨克（Gay-Lussac）发明的。

它是指在20℃条件下，每100毫升酒液中含有多少毫升的酒精。这种表示法比较容易理解，因而使用较为广泛。标准酒度又称为盖．吕萨克酒度，通常用百分比表示此法，或用缩写GL表示。

(6)水浴算法扩展阅读

美制酒度的发明都早于标准酒度的出现，它们都用酒精纯度“proof”来表示。但三种酒度之间可以进行换算。因此，如果知道英制酒度，想算出它的美制酒度或标准酒度，只要有下列公式就可以算出来：

标准酒度×1.75=英制酒度

标准酒度×2=美制酒度

英制酒度×8÷7=美制酒度

欧式百分比法

欧式百分比法〔酒精度百分比法〕：欧洲、日本等国，是以百分比或度来表示，如威士忌一般为40%Vol或43%Vol，白兰地为40%Vol，葡萄酒为12%~12.5%Vol。

❼ 过氧化氢酶活性测定公式计算方法

过氧化氢酶的活性测定——紫外吸收法
【原理】
h2o2在240nm波长下有强烈吸收，过氧化氢酶能分解过氧化氢，使反应溶液吸光度(a240)随反应时间而降低。根据测量吸光率的变化速度即可测出过氧化氢酶的活性。
【仪器与用具】
紫外分光光度计；离心机；研钵；250ml容量瓶1个；0.5ml刻度吸管2支，2ml刻度吸管1支；10ml试管3支；恒温水浴；
【试剂】
0.2mol/l
ph7.8磷酸缓冲液（内含1%聚乙烯吡咯烷酮）；
0.1mol/l
h2o2（用0.1mol/l高锰酸钾标定）。
【方法】
1.酶液提取：称取新鲜小麦叶片或其它植物组织0.5g置研钵中，加入2～3ml
4℃下预冷的ph7.0磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后，转入25ml容量瓶中，并用缓冲液冲洗研钵数次，合并冲洗液，并定容到刻度。混合均匀将量瓶置5℃冰箱中静置10min，取上部澄清液在4000rpm下离心15min，上清液即为过氧化氢酶粗提液。5℃下保存备用。
2.测定：取10ml试管3支，其中2支为样品测定管，1支为空白管，按表40-2顺序加入试剂。
表40-2
紫外吸收法测定h2o2样品液配置表
管
号
s1
s2
s3
粗酶液(ml)
0.2
0.2
0.2
ph7.8磷酸(ml)
1.5
1.5
1.5
蒸馏水(ml)
1.0
1.0
1.0
25℃预热后,逐管加入0.3ml
0.1mol/l的h2o2，每加完一管立即记时，并迅速倒入石英比色杯中，240nm下测定吸光度，每隔1min读数1次，共测4min，待3支管全部测定完后，按下式计算酶活性。
3.结果计算：
以1min内a240减少0.1的酶量为1个酶活单位（u）。
过氧化氢酶活性(u/gfw/min)=
式中
a240
=
as0－
as0—加入煮死酶液的对照管吸光值；
as1,
as2—样品管吸光值；
vt—粗酶提取液总体积（ml）；
v1—测定用粗酶液体积（ml）；
fw—样品鲜重（g）；
0.1—a240每下降0.1为1个酶活单位（u）；
t—加过氧化氢到最后一次读数时间（min）。