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水浴算法

发布时间: 2022-06-03 18:30:22

❶ 苯酚是放在试剂瓶里加热熔化的,那水浴的温度应该提高到多少呢

理论上水浴的温度超过41就可以了,不过要快点的话最好有50度以上.
另外要看你的苯酚含水不?含水的苯酚熔点会降低很多,大概每增加0.1%的水分,其熔点会降低0.4度(经验算法,和实际稍有偏差)!
欢迎提问苯酚的问题!!

❷ 什么情况下需要计算置换价还有什么计算方法

由于药物与基质相对密度不同,加入药物所占体积不一定是等重量基质体积,特别是堆密度小的药物占有的体积更大,为使栓剂含药量准确,必须测定置换价,从而准确计算基质用量。

❸ 如何实现猪舍温度自动化控制

猪舍除了温度控制外,通常还需控制通风、湿度;
光是温度控制的话,很简单:在典型位置布置温度传感器,合适位置装加热器,两个装置自动化连在一个XMT调节仪器上,设定好需要的温度就可。前面只是对小型猪舍适用,大型的,场地大,需多点设置传感器和加热器,温度场还有耦合关系(相互影响),控制就复杂了,不是简单的XMT调节仪器能够解决的,需要用到计算机、智能算法控制策略了,如果加上通风、湿度等问题,就更加复杂了。看你对象特征、需求了,这么简单的一问,人家很难回答,真有需求的话,把问题讲全面仔细了。

❹ 您好,我想请教一下食品菌落总数计算方法,和怎么做出厂检验报告

1 范围

本标准规定了食品中菌落总数(Aerobic plate count)的测定方法。

本标准适用于食品中菌落总数的测定。

2 术语和定义

2.1 菌落总数 aerobic plate count

食品检样经过处理,在一定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后,所得每g(mL)检样中形成的微生物菌落总数。

3 设备和材料

除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:

3.1 恒温培养箱:36 ℃±1 ℃,30 ℃±1 ℃。

3.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。

3.3 恒温水浴箱:46 ℃±1 ℃。

3.4 天平:感量为0.1 g。

3.5 均质器。

3.6 振荡器。

3.7 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL 刻度)、10 mL(具0.1 mL 刻度)或微量移液器及吸头。

3.8 无菌锥形瓶:容量250 mL、500 mL。

3.9 无菌培养皿:直径90 mm。

3.10 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。

3.11 放大镜或/和菌落计数器。

4 培养基和试剂

4.1 平板计数琼脂培养基:见附录A 中A.1。

4.2 磷酸盐缓冲液:见附录A 中A.2。

4.3 无菌生理盐水:见附录A 中A.3。

5 检验程序

菌落总数的检验程序见图1。



1 菌落总数的检验程序
6 操作步骤

6.1 样品的稀释

6.1.1 固体和半固体样品:称取25 g 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000 r/min~10000 r/min 均质1 min~2 min,或放入盛有225 mL 稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min~2 min,制成1:10 的样品匀液。

6.1.2 液体样品:以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10 的样品匀液。

6.1.3 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL,沿管壁缓慢注于盛有9 mL 稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1:100 的样品匀液。

6.1.4 按6.1.3 操作程序,制备10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换用1 次1 mL 无菌吸管或吸头。

6.1.5 根据对样品污染状况的估计,选择2 个~3 个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10 倍递增稀释时,吸取1 mL 样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。同时,分别吸取1 mL 空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。

6.1.6 及时将15 mL~20 mL 冷却至46 ℃的平板计数琼脂培养基(可放置于46 ℃±1 ℃恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。

6.2 培养

6.2.1 待琼脂凝固后,将平板翻转,36 ℃±1 ℃培养48 h±2 h。水产品30 ℃±1 ℃培养72 h±3 h。

6.2.2 如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基(约4 mL),凝固后翻转平板,按6.2.1 条件进行培养。

6.3 菌落计数

可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位(colony-forming units,CFU)表示。

6.3.1 选取菌落数在30 CFU~300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU 的平板记录具体菌落数,大于300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。

6.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。

6.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌

❺ 用比重瓶测硫酸的含量,步骤及计算方法。

①将比重瓶置于恒温水浴中,并保持一定温度t。②称得比重瓶本身的质量为ω,装满纯水时总质量为W
③比重瓶装满硫酸时的总质量为W′
硫酸的比重
=(W’ーω)/(Wーω)

❻ 酒精度数如何计算

酒的度数表示酒中含乙醇的体积百分比,通常是以20℃时的体积比表示的,如50度的酒,表示在100毫升的酒中,含有乙醇50毫升(20℃),酒精度一般是以容量来计算,故在酒精浓度后,会加上“Vol. ”以示与重量计算之区分。

标准酒度:标准酒度(Alcohol% by volume)。标准酒度是法国着名化学家盖·吕萨克(Gay-Lussac)发明的。

它是指在20℃条件下,每100毫升酒液中含有多少毫升的酒精。这种表示法比较容易理解,因而使用较为广泛。标准酒度又称为盖.吕萨克酒度,通常用百分比表示此法,或用缩写GL表示。


(6)水浴算法扩展阅读

美制酒度的发明都早于标准酒度的出现,它们都用酒精纯度“proof”来表示。但三种酒度之间可以进行换算。因此,如果知道英制酒度,想算出它的美制酒度或标准酒度,只要有下列公式就可以算出来:

标准酒度×1.75=英制酒度

标准酒度×2=美制酒度

英制酒度×8÷7=美制酒度

欧式百分比法

欧式百分比法〔酒精度百分比法〕:欧洲、日本等国,是以百分比或度来表示,如威士忌一般为40%Vol或43%Vol,白兰地为40%Vol,葡萄酒为12%~12.5%Vol。

❼ 过氧化氢酶活性测定公式计算方法

过氧化氢酶的活性测定——紫外吸收法
【原理】
h2o2在240nm波长下有强烈吸收,过氧化氢酶能分解过氧化氢,使反应溶液吸光度(a240)随反应时间而降低。根据测量吸光率的变化速度即可测出过氧化氢酶的活性。
【仪器与用具】
紫外分光光度计;离心机;研钵;250ml容量瓶1个;0.5ml刻度吸管2支,2ml刻度吸管1支;10ml试管3支;恒温水浴;
【试剂】
0.2mol/l
ph7.8磷酸缓冲液(内含1%聚乙烯吡咯烷酮);
0.1mol/l
h2o2(用0.1mol/l高锰酸钾标定)。
【方法】
1.酶液提取:称取新鲜小麦叶片或其它植物组织0.5g置研钵中,加入2~3ml
4℃下预冷的ph7.0磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后,转入25ml容量瓶中,并用缓冲液冲洗研钵数次,合并冲洗液,并定容到刻度。混合均匀将量瓶置5℃冰箱中静置10min,取上部澄清液在4000rpm下离心15min,上清液即为过氧化氢酶粗提液。5℃下保存备用。
2.测定:取10ml试管3支,其中2支为样品测定管,1支为空白管,按表40-2顺序加入试剂。
表40-2
紫外吸收法测定h2o2样品液配置表


s1
s2
s3
粗酶液(ml)
0.2
0.2
0.2
ph7.8磷酸(ml)
1.5
1.5
1.5
蒸馏水(ml)
1.0
1.0
1.0
25℃预热后,逐管加入0.3ml
0.1mol/l的h2o2,每加完一管立即记时,并迅速倒入石英比色杯中,240nm下测定吸光度,每隔1min读数1次,共测4min,待3支管全部测定完后,按下式计算酶活性。
3.结果计算:
以1min内a240减少0.1的酶量为1个酶活单位(u)。
过氧化氢酶活性(u/gfw/min)=
式中
a240
=
as0-
as0—加入煮死酶液的对照管吸光值;
as1,
as2—样品管吸光值;
vt—粗酶提取液总体积(ml);
v1—测定用粗酶液体积(ml);
fw—样品鲜重(g);
0.1—a240每下降0.1为1个酶活单位(u);
t—加过氧化氢到最后一次读数时间(min)。

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