PK酶20mgml怎么配置

❶ 如何配置胶原酶2u/ml的胶原酶溶液，需要多少毫克胶原酶

梯度的配置一般高往低逐步稀释，一般现配一个大浓度的储备液你可以配1g/ml的，方法是称取100g的样品溶解后用100ml的容量瓶定容
50mg/ml的配置：量取5ml的1g/ml储备液稀释后，用100ml的容量品定容
40mg/ml：量取4ml的1g/ml储备液稀释后，用100ml的容量品定容
30mg/ml：量取3ml的1g/ml储备液稀释后，用100ml的容量品定容
,20mg/ml：量取2ml的1g/ml储备液稀释后，用100ml的容量品定容
10mg/ml：量取1ml的1g/ml储备液稀释后，用100ml的容量品定容
望采纳，谢谢

❷ 提DNA用的1%SDS-PK（蛋白酶K）如何配置

50MMOL/L TRIS-CL（PH8.0）和1.5MMOL/L乙酸钙,高压灭菌后，该混合溶液配制成含蛋白酶K浓度为20MG/ML的溶液，将配制的蛋白酶K溶液-20度保存。

❸ 求助： 胃蛋白酶,酶活力≥1200.0U/g,如何配制浓度为20IU/mL的酶溶液

1:3000胃蛋白酶吧？20*1000/3000=6.67g—》1000ml
看标准1:10000称2g—》1000ml同理

❹ chelex-100提取DNA，但是不知道chelex-100怎么配

Chelex-100法提取生物检材所需试剂的配制
1． 5％ Chelex-100 （w/v）
称取5克Chelex-100,加100ml灭菌纯水,放4℃保存.
2． 10％SDS
称取10克优级纯的SDS,加纯水到100ml溶解,室温保存.
3． 5mg/ml PK酶（蛋白酶K）
称取5mg PK酶,溶于1ml灭菌纯水中,－20℃保存.
4． 1M DTT (二硫苏糖醇)
称取154.3mg DTT加1ml灭菌纯水溶解,－20℃保存.

❺ 大概配成多少mg/ml的，蛋白酶K也是粉末状的，怎么配呢

一般先低速离心将粉末甩在管底部 加入2.5mL去离子水浓度就是20mg/ml,具体浓度看你的实验要求，操作时戴口罩 对皮肤黏膜有损伤，希望对你有帮组。

❻ fish实验中加固定液时要混合均匀吗

各种溶液的配制 2.1：制NaOH溶液
a) 用天平称取4克分析纯的NaOH固体，置于一只三角烧瓶中。
b) 用200ml量筒准确取100ml蒸馏水，缓缓注入盛放NaOH固体的三角烧瓶中。 c) 摇荡三角烧瓶使NaOH固体充分溶解。
d) 然后缓缓倾倒入250ml广口瓶中，密封保存备用。 2.2：配制20XSSC溶液：
取氯化钠175.5g和柠檬酸三钠88.2g，加入1000ml双蒸水中，用磁力搅拌棒搅拌，使其完全溶解，用滤纸过滤，调pH为5.3，封口膜封好，4℃保存备用，有效期6个月。 2.3：配制2XSSC溶液：
用20×SSC和双蒸水，按1:9的比例稀释，调pH为7.0, 封口膜封好，4℃保存备用，有效期6个月。
2.4：2×SSC/0.1%NP-40配制 50ml 20×SSC(pH 5.3) 0.5ml NP-40 449.5ml 双蒸水 500ml
调pH为7.0 ,封口膜封好，室温保存备用，有效期6个月。 2.5：系列酒精的配制
取无水乙醇28ml和34ml，分别与12ml和6ml双蒸水混合，配成70%和85%的酒精，与无水乙醇共同组成70%，85%，100%的系列酒精，封口膜封好，室温保存备用；另配制一上述系列酒精，封口膜封好，-20℃室温保存备用。 2.6：PBS缓冲液： PBS 1L配方（pH7.4）： 磷酸二氢钾(KH2PO4)：0.27g， 磷酸氢二钠(Na2HPO4)：1.42g， 氯化钠(NaCl)：8g， 氯化钾(KCl)0.2g，
加去离子水约800mL充分搅拌溶解，然后加入浓盐酸调pH至7.4，最后定容到1L。高温高压灭菌后室温保存。
2.7：0.075M Kcl低渗液：
钾5.59g加入1000ml去离子水中溶解（或Kcl 2.794g溶入500ml去离子水中），备用，4摄氏度低温保存。 2.8：固定液：
按甲醇（AR）：冰乙酸(AR)=3:1的比例配制细胞固定液，细胞固定液现配现用。 2.9:1M Hcl：
取.9ml浓Hcl加去离子到100ml混匀，4℃保存备用。保存1个月。
2.10：0.08mg/ml胃蛋白酶工作液：
A：取40mg胃蛋白酶，放入1.5MLEP管中，加1ml去离子水溶解，分装到10个200ul离心管中。
B：次使用时，在考普林瓶中加50ml去离子水，加入500ul1M Hcl，加入一管分装的胃蛋白酶溶液（100ul）。 2.11:200ug/mlPK工作液： a PK储存液（20mg/ml）：称取0.1g蛋白酶K干粉溶于2XSSC（PH=7.0）溶液中，轻轻摇动，直至PK完全溶解，不要漩涡混匀。-20℃保存。 b 蛋白酶K工作液（200ug/ml）：取0.4mlPK储存液溶于40ml2XSSC（PH7.0）溶液中。

❼ 20mg/ml溶液怎么配置

20mg/ml溶液配置：将20克溶质溶解到80克的溶剂中，定容100ML是不对的，因为20%的溶液指的是溶质与溶液的质量比值，不是体积比值，每种物质的密度有都不一样，所以这个和体积没有一点关系的，而只要有电子秤就可以配出20%的溶液了。

假设需要配置100毫升的溶液。

①准确称取20g溶质。

②用少量水或者对应的溶剂将这些溶质溶解。

③将溶解后获得的溶液转入100ml容量瓶中。

④多次洗涤溶解溶质时所使用的玻璃棒、烧杯，洗涤液也转入容量瓶中。

⑤定容至100ml刻度线。

⑥混匀，即得。

步骤

（1）计算：计算配制所需固体溶质的质量或液体浓溶液的体积。

（2）称量：用托盘天平称量固体质量或用量筒量取液体体积。

（3）溶解：在烧杯中溶解或稀释溶质，恢复至室温。检查容量瓶是否漏水。

（4）转移：将烧杯内冷却后的溶液沿玻璃棒小心转入一定体积的容量瓶中。

（5）洗涤：用蒸馏水洗涤烧杯和玻璃棒2～3次，并将洗涤液转入容器中，振荡，使溶液混合均匀。

以上内容参考：网络-溶液配制

❽ 我做的TUNEL，说明书上说是要20ug/ml的蛋白酶k，我买来的蛋白酶K是20mg/ml的不知道怎么稀释

1mg=1000ug，这个浓度不用稀释了，用的时候1ml反应体系中加1ul就可以了，终浓度为20ug/ml。蛋白酶k分不分装应该都可以，因为保存温度是-20℃，是液态的，用的时候不需要融解，所以直接拿出来用就可以了。保存时间应该挺长的，具体看说明书。good luck！