水浴演算法

❶ 苯酚是放在試劑瓶里加熱熔化的，那水浴的溫度應該提高到多少呢

理論上水浴的溫度超過41就可以了,不過要快點的話最好有50度以上.
另外要看你的苯酚含水不?含水的苯酚熔點會降低很多,大概每增加0.1%的水分,其熔點會降低0.4度(經驗演算法,和實際稍有偏差)!
歡迎提問苯酚的問題!!

❷ 什麼情況下需要計算置換價還有什麼計算方法

由於葯物與基質相對密度不同，加入葯物所佔體積不一定是等重量基質體積，特別是堆密度小的葯物佔有的體積更大，為使栓劑含葯量准確，必須測定置換價，從而准確計算基質用量。

❸ 如何實現豬舍溫度自動化控制

豬舍除了溫度控制外，通常還需控制通風、濕度；
光是溫度控制的話，很簡單：在典型位置布置溫度感測器，合適位置裝加熱器，兩個裝置自動化連在一個XMT調節儀器上，設定好需要的溫度就可。前面只是對小型豬舍適用，大型的，場地大，需多點設置感測器和加熱器，溫度場還有耦合關系（相互影響），控制就復雜了，不是簡單的XMT調節儀器能夠解決的，需要用到計算機、智能演算法控制策略了，如果加上通風、濕度等問題，就更加復雜了。看你對象特徵、需求了，這么簡單的一問，人家很難回答，真有需求的話，把問題講全面仔細了。

❹ 您好，我想請教一下食品菌落總數計算方法，和怎麼做出廠檢驗報告

1 范圍

本標准規定了食品中菌落總數（Aerobic plate count）的測定方法。

本標准適用於食品中菌落總數的測定。

2 術語和定義

2.1 菌落總數 aerobic plate count

食品檢樣經過處理，在一定條件下（如培養基、培養溫度和培養時間等）培養後，所得每g（mL）檢樣中形成的微生物菌落總數。

3 設備和材料

除微生物實驗室常規滅菌及培養設備外，其他設備和材料如下：

3.1 恆溫培養箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。

3.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。

3.3 恆溫水浴箱：46 ℃±1 ℃。

3.4 天平：感量為0.1 g。

3.5 均質器。

3.6 振盪器。

3.7 無菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸頭。

3.8 無菌錐形瓶：容量250 mL、500 mL。

3.9 無菌培養皿：直徑90 mm。

3.10 pH 計或pH 比色管或精密pH 試紙。

3.11 放大鏡或/和菌落計數器。

4 培養基和試劑

4.1 平板計數瓊脂培養基：見附錄A 中A.1。

4.2 磷酸鹽緩沖液：見附錄A 中A.2。

4.3 無菌生理鹽水：見附錄A 中A.3。

5 檢驗程序

菌落總數的檢驗程序見圖1。

圖

1 菌落總數的檢驗程序
6 操作步驟

6.1 樣品的稀釋

6.1.1 固體和半固體樣品：稱取25 g 樣品置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質杯內，8000 r/min～10000 r/min 均質1 min～2 min，或放入盛有225 mL 稀釋液的無菌均質袋中，用拍擊式均質器拍打1 min～2 min，製成1:10 的樣品勻液。

6.1.2 液體樣品：以無菌吸管吸取25 mL 樣品置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌錐形瓶（瓶內預置適當數量的無菌玻璃珠）中，充分混勻，製成1:10 的樣品勻液。

6.1.3 用1 mL 無菌吸管或微量移液器吸取1:10 樣品勻液1 mL，沿管壁緩慢注於盛有9 mL 稀釋液的無菌試管中（注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面），振搖試管或換用1 支無菌吸管反復吹打使其混合均勻，製成1:100 的樣品勻液。

6.1.4 按6.1.3 操作程序，制備10 倍系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋一次，換用1 次1 mL 無菌吸管或吸頭。

6.1.5 根據對樣品污染狀況的估計，選擇2 個～3 個適宜稀釋度的樣品勻液（液體樣品可包括原液），在進行10 倍遞增稀釋時，吸取1 mL 樣品勻液於無菌平皿內，每個稀釋度做兩個平皿。同時，分別吸取1 mL 空白稀釋液加入兩個無菌平皿內作空白對照。

6.1.6 及時將15 mL～20 mL 冷卻至46 ℃的平板計數瓊脂培養基（可放置於46 ℃±1 ℃恆溫水浴箱中保溫）傾注平皿，並轉動平皿使其混合均勻。

6.2 培養

6.2.1 待瓊脂凝固後，將平板翻轉，36 ℃±1 ℃培養48 h±2 h。水產品30 ℃±1 ℃培養72 h±3 h。

6.2.2 如果樣品中可能含有在瓊脂培養基表面彌漫生長的菌落時，可在凝固後的瓊脂表面覆蓋一薄層瓊脂培養基（約4 mL），凝固後翻轉平板，按6.2.1 條件進行培養。

6.3 菌落計數

可用肉眼觀察，必要時用放大鏡或菌落計數器，記錄稀釋倍數和相應的菌落數量。菌落計數以菌落形成單位（colony-forming units，CFU）表示。

6.3.1 選取菌落數在30 CFU～300 CFU 之間、無蔓延菌落生長的平板計數菌落總數。低於30 CFU 的平板記錄具體菌落數，大於300 CFU 的可記錄為多不可計。每個稀釋度的菌落數應採用兩個平板的平均數。

6.3.2 其中一個平板有較大片狀菌落生長時，則不宜採用，而應以無片狀菌落生長的平板作為該稀釋度的菌落數；若片狀菌落不到平板的一半，而其餘一半中菌落分布又很均勻，即可計算半個平板後乘以2，代表一個平板菌落數。

6.3.3 當平板上出現菌落間無明顯界線的鏈狀生長時，則將每條單鏈作為一個菌

❺ 用比重瓶測硫酸的含量，步驟及計算方法。

①將比重瓶置於恆溫水浴中，並保持一定溫度t。②稱得比重瓶本身的質量為ω，裝滿純水時總質量為W
③比重瓶裝滿硫酸時的總質量為W′
硫酸的比重
=（W』ーω）/（Wーω）

❻ 酒精度數如何計算

酒的度數表示酒中含乙醇的體積百分比，通常是以20℃時的體積比表示的，如50度的酒，表示在100毫升的酒中，含有乙醇50毫升(20℃)，酒精度一般是以容量來計算，故在酒精濃度後，會加上「Vol. 」以示與重量計算之區分。

標准酒度：標准酒度（Alcohol% by volume）。標准酒度是法國著名化學家蓋·呂薩克（Gay-Lussac）發明的。

它是指在20℃條件下，每100毫升酒液中含有多少毫升的酒精。這種表示法比較容易理解，因而使用較為廣泛。標准酒度又稱為蓋．呂薩克酒度，通常用百分比表示此法，或用縮寫GL表示。

(6)水浴演算法擴展閱讀

美製酒度的發明都早於標准酒度的出現，它們都用酒精純度「proof」來表示。但三種酒度之間可以進行換算。因此，如果知道英制酒度，想算出它的美製酒度或標准酒度，只要有下列公式就可以算出來：

標准酒度×1.75=英制酒度

標准酒度×2=美製酒度

英制酒度×8÷7=美製酒度

歐式百分比法

歐式百分比法〔酒精度百分比法〕：歐洲、日本等國，是以百分比或度來表示，如威士忌一般為40%Vol或43%Vol，白蘭地為40%Vol，葡萄酒為12%~12.5%Vol。

❼ 過氧化氫酶活性測定公式計算方法

過氧化氫酶的活性測定——紫外吸收法
【原理】
h2o2在240nm波長下有強烈吸收，過氧化氫酶能分解過氧化氫，使反應溶液吸光度(a240)隨反應時間而降低。根據測量吸光率的變化速度即可測出過氧化氫酶的活性。
【儀器與用具】
紫外分光光度計；離心機；研缽；250ml容量瓶1個；0.5ml刻度吸管2支，2ml刻度吸管1支；10ml試管3支；恆溫水浴；
【試劑】
0.2mol/l
ph7.8磷酸緩沖液（內含1%聚乙烯吡咯烷酮）；
0.1mol/l
h2o2（用0.1mol/l高錳酸鉀標定）。
【方法】
1.酶液提取：稱取新鮮小麥葉片或其它植物組織0.5g置研缽中，加入2～3ml
4℃下預冷的ph7.0磷酸緩沖液和少量石英砂研磨成勻漿後，轉入25ml容量瓶中，並用緩沖液沖洗研缽數次，合並沖洗液，並定容到刻度。混合均勻將量瓶置5℃冰箱中靜置10min，取上部澄清液在4000rpm下離心15min，上清液即為過氧化氫酶粗提液。5℃下保存備用。
2.測定：取10ml試管3支，其中2支為樣品測定管，1支為空白管，按表40-2順序加入試劑。
表40-2
紫外吸收法測定h2o2樣品液配置表
管
號
s1
s2
s3
粗酶液(ml)
0.2
0.2
0.2
ph7.8磷酸(ml)
1.5
1.5
1.5
蒸餾水(ml)
1.0
1.0
1.0
25℃預熱後,逐管加入0.3ml
0.1mol/l的h2o2，每加完一管立即記時，並迅速倒入石英比色杯中，240nm下測定吸光度，每隔1min讀數1次，共測4min，待3支管全部測定完後，按下式計算酶活性。
3.結果計算：
以1min內a240減少0.1的酶量為1個酶活單位（u）。
過氧化氫酶活性(u/gfw/min)=
式中
a240
=
as0－
as0—加入煮死酶液的對照管吸光值；
as1,
as2—樣品管吸光值；
vt—粗酶提取液總體積（ml）；
v1—測定用粗酶液體積（ml）；
fw—樣品鮮重（g）；
0.1—a240每下降0.1為1個酶活單位（u）；
t—加過氧化氫到最後一次讀數時間（min）。