基因編程入門

① 基因編程的介紹

基因編程，是一項先進的生物基因改良技術。擬通過計算機編程的方式將基因片段進行重組和修飾，可以對人類一些遺傳病的治療起到重要作用。

② 基因編程的介紹

基因編程，是一項先進的生物基因改良技術，美國於二十一世紀初期於紐約州立大學，SUNY Albany Mohawk Tower suite 2013 建立其部門進行相關研究。 這門技術顧名思義原理與電腦編程相像，將人類基因代碼公式化，進行編輯及重組，並以「人體」執行其程序代碼。負責人稱，如果研發順利，未來二十年內可自由更換人類的瞳孔顏色或形狀，對人體某些器官進行改良，甚至可以進行 CCR5-delta32 人工突變使人體對艾滋病病毒免疫。

③ 編程怎麼入門

編程怎麼入門如下：

1、對於初學者來鉛猛說，可以採用視頻+書籍的方式進行學習。這兩種方式形成互補關系。編程教學視頻可以讓你迅速掌握編程，但通常比較生動、淺顯，不成系統。而書本是比較系統，深入，但是枯燥，所以最好的方法是書和視頻結合。

2、入門期遇到難題，耗了半天時間還是沒弄懂，可以暫時跳鬧搏過，知識積累到一定程度，回頭再進行解決你會發現簡單多了。

匯編語言：是面向機器的程序設計語言，為了解決機器語言難以記憶液激祥和理解的問題。匯編語言，機器不能直接識別，需要一種程序將匯編語言翻譯成機器語言。

高級語言：屏蔽了底層許多細節，高級語言和匯編語言同樣完成一項工作，但是效率確實匯編語言的3-6倍。

腳本語言：多為無類型的，比如一個變數可能現在為字元串，下一刻變為整型。

④ 基因編程的進程

勞倫斯伯克利國家實驗室（Berkeley Lab）的科學家發現了一種更有效的基因組編輯新方法，為基因工程和基因組研究者帶來了福音。基因工程改造的微生物（如細菌和真菌）在生物能源和葯物研發等方面起到了關鍵作用，而這一研究成果能為科學家提供極大的幫助。
勞倫斯伯克利國家實驗室的研究團隊發現了一種雙鏈RNA，能指導細菌蛋白在特定位點剪切外源DNA，而且將這種雙鏈RNA改造為單鏈RNA，能指導細菌蛋白對幾乎所有DNA序列進行剪切。該文章發表在Science雜志上。
研究人員發現的這種RNA引導的雙鏈DNA剪切是細菌獲得性免疫系統的核心。細菌和古細菌面臨著病毒和質粒的不斷攻擊，微生物為了生存採用了以CRISPR（成簇的規律間隔的短迴文重復序列）為核心的免疫系統。細菌和古細菌能夠利用小crRNA分子（CRISPR-derived RNA），結合CRISPR和相關內切酶Cas蛋白（CRISPR-associated蛋白）靶標並摧毀入侵病毒和質粒的DNA。
CRISPR/Cas免疫系統主要有三種類型。這里研究人員研究的是完全依賴Cas9內切酶家族來靶標和剪切外源DNA的II型CRISPR/Cas免疫系統。研究發現在這一系統中，crRNA通過鹼基配對與tracrRNA（trans-activating RNA）結合，形成雙鏈RNA。這一tracrRNA:crRNA二元復合體指導Cas9蛋白在crRNA引導序列靶標的特定位點剪切雙鏈DNA。在與crRNA引導序列互補的位點，Cas9蛋白的HNH核酸酶結構域剪切互補鏈而Cas9 RuvC-like 結構域剪切非互補鏈。（見右圖）
研究人員將這種tracrRNA:crRNA二元復合體改造為單鏈RNA嵌合體，也能同樣指導Cas9蛋白在特定位點剪切雙鏈DNA。tracrRNA:crRNA復合體結合Cas9蛋白，並通過crRNA與目標DNA鹼基配對引導Cas9蛋白到特定DNA序列，微生物通過這一機制剪切並破壞病毒和質粒，而這一系統也可以用於對基因組中目標DNA進行改造。
研究人員正在深入研究這一RNA引導的剪切作用的細節，並測試這一系統是否能在真菌、線蟲、植物和人類細胞等真核生物中起作用。
這一機制有望成為有效的基因組改造新工具，可編程RNA引導的基因組改造為基因組編輯開辟了新途徑。
可編程的DNA剪刀：細菌免疫系統發現的雙鏈RNA指導Cas9在特異位點剪切入侵DNA。人為改造這一雙鏈RNA，可以用於進行基因組編輯。
Science雜志原文摘要：
A programmable al RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity
CRISPR/Cas systems provide bacteriaand archaea with adaptiveimmunityagainst viruses and plasmids by using crRNAs to guide the silencing of invading nucleic acids. We show here that ina subset of these systems, the mature crRNA base-paired to trans-activating tracrRNA forms a two-RNA structure that directs the CRISPR-associated protein Cas9 to introce double-stranded (ds) breaks in target DNA. At sites complementary to the crRNA-guide sequence, the Cas9 HNH nuclease domain cleaves the complementary strand while the Cas9 RuvC-like domain cleaves the noncomplementary strand. The al-tracrRNA:crRNA, when engineered as a single RNA chimera, also directs sequence-specific Cas9 dsDNA cleavage. Our study reveals a family of endonucleases that use al RNAs for site-specific DNA cleavage and highlights the potential to exploit the system for RNA-programmable genome editing.